Effects of cytokinins and auxins on the micropropagation of a local grapevine (Vitis vinifera L.) cultivar, using nodal explants

  • Osman Ali Faculty of Agriculture and Natural Resources, University of Gezira, Wad Medani, Sudan
  • Mohamed Ali Agricultural Research Corporation, Wad Medani, Sudan
  • Abdel Moneim Salama Faculty of Agriculture and Natural Resources, University of Gezira, Wad Medani, Sudan.

Abstract

   This study was conducted in the Plant Tissue Culture Unit of the Agricultural Research Corporation, Wad Medani, Sudan, during the years 2006- 2007. The objectives were to develop an in vitro technique for the propagation of a local cultivar of grapevine. The basal Murashige and Skoog medium was supplemented with benzylaminopurine (BAP) and kinetin both at concentrations of 0.0, 0.25, 0.5, 1.0, 2.0, 4.0, 6.0, and 8.0 mg/l. Isopentenyladenine (2iP) and BAP were also used at concentrations of 0.0, 1.0, 1.5, and 2.0 mg/l.  The interaction effects of indole acetic acid (IAA) at concentrations of 0.0, 0.25, 0.5 and 1.0 mg/l with BAP at 1.0 or 2.0 mg/l and indole butyric acid (IBA) at concentrations of 0.0, 0.1, 0.3, and 0.5 mg/l with 2iP at 1.0 or 2.0 mg/l were also tested. For in vitro rooting, plantlets were cultured on MS medium supplemented with different concentrations of NAA (0.0, 0.25, 0.5, and 1.0 mg/l). The best morphogenesis of shoots was achieved on MS medium supplemented with BAP at 1.0-1.5 mg/l. The morphogenetic response increased with time and the best response was attained after six weeks. Higher concentrations of BAP (2.0-8.0 mg/l) resulted in abnormal growth of plantlets. The combination of BAP with IAA did not improve shoot morphogenesis. The morphogenesis of the nodal explants was similar on kinetin and 2iP which resulted in a single shoot per explant. The combinations of 2iP at different concentrations with IBA did not improve shoot morphogenesis compared to 2iP alone. The best rooting of regenerated shoots of grapevine was achieved on MS medium supplemented with 0.25 and 0.5 mg/l NAA after four weeks.


أجريت هذه الدراسة بوحدة زراعة الأنسجة النباتية بهيئة البحوث الزراعية بواد مدني، السودان، خلال الفترة 2006-2007 م. كان الهدف من هذه الدراسة إكثار السلالة البلدية لكرمه العنب عن طريق تقنية الإكثار النسيجي. أختبر أثر ثلاثة أنواع  من السيتوكينينات في وسط  موراشيجي واسكوق و هي بنزيل أمينوبيورين (BAP) و الكينيتين (kinetin ) بالتركيزات  0.0, 0.25 ،0.5 ،1.0، 2.0، 4.0، 6.0 و8.0 ملجم/لتر وآيزوبنتينيل أدنين (2iP)و BAP بالتركيزات 0.0 , 1.0 , 1.5 و2.0 ملجم/لتر . كما تم اختبار تداخلها مع بعض الاوكسينات مثل اندول حامض الخليك(IAA)   بالتركيزات     0.0, 0.25 ،0.5   و1.0 ملجم/لتر مع BAP  بتركيز 1.0 أو2.0 ملجم/لتر و اندول حامض البيوترك IBA) ) بالتركيزات 0.0 ,  0.1, 0.3 و0.5 ملجم/لتر مع   2iPبتركيز 1.0 أو2.0 ملجم/لتر . أختبر أثر منظم النمو نفثالين حامض الخليك (NAA ) بالتركيزات  0.0, 0.25،0.5   و1.0 ملجم/لتر علي تحفيز التجذير لنبتات سلالة العنب البلدية المنتجة نسيجيا.  اختلفت استجابة البراعم للإكثار النسيجي وذلك باختلاف منظم النمو ودرجة تركيزه. وكانت الاختلافات معنوية بين أنواع هذه المنظمات ودرجة تركيزها.  أفضل استجابة لنمو البراعم كانت علي وسط  موراشيجي واسكوق مضافا إليه BAP بتركيز 1.0 أو 1.5 ملجم/لتر مقارنة بمنظمات النمو الأخرى. كما إزدات أعداد النبتات النامية بزيادة فترة تحضين المنفصل النباتي المزروع حتى الأسبوع السادس. تسببت التركيزات العالية من BAP (2-8 ملجم/لتر) في إنتاج سيقان منتفخة و نمو غير طبيعي للأوراق. لم يؤدي تداخل IAA مع BAP إلي  زيادة عدد النبتات النامية علي المنفصل النباتي المزروع . منظمات النمو kinetin و2iP لم تظهر أي فروق معنوية ما بين  تركيزاتها المختلفة و كانت متساوية في عدد النبتات المنتجة وأعطت نبتة واحدة لكل منفصل نباتي. لم يحسن تداخل IBA مع 2iP في زيادة عدد النبتات النامية علي المنفصل النباتي المزروع.  أفضل استجابة لنمو الجذور كانت علي وسط  موراشيجي واسكوق مضافا إليهNAA  بتركيز 0.25 أو0.5 ملجم/لتر بعد أربعه أسابيع من الزراعة. 

References

Avery, J.D. 1999. Propagation of Norton-Cynthiana, pp.1-6. In: Proceedings of the 14th Annual Midwest Regional Grape and Wine Conf. Missouri, USA.
Banilas, G. and E. Korkas. 2007. Rapid micropropagation of grapevine cv. Agiorgitiko through lateral bud development. Journal of Science and Technology 2: 31-38.
Bigger, B.B. and P.E Reed. 2004. Tissue culture improves the propagation of Norton grapevine (Vitis aestivalis). Acta Horticulturae 640: 261-263.
Han, D.S., Y. Niimi and J.Y. Wu. 2003. Micropropagation of Vitis amurrensis Rupr. Vitis 42(3): 163-164.
Heloir, M.C., J.C. Fournioux, L. Oziol and R. Bessis. 1997. An improved procedure for the in vitro propagation of grapevine (Vitis vinifera cv. Pinot noir) using axillary-bud microcuttings. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 49:223-225.
Ibanez, A., M. Valero and A. Morte. 2003. Influence of cytokinins and subculturing on proliferation capacity of single-axillary bud microcuttings of Vitis vinifera L. cv. Napoleon. Anales de Biologia 25:81-90.
Ibanez, A., M. Valero and A.Morte. 2005. Establishment and in vitro clonal propagation of the Spanish autochthonous table grapevine cultivar: An improved system where proliferating cultures alternate with rooting ones. Anales de Biologia 27: 211-220.
Kim, S. and K. Seon-Kyu. 2002. Effects of auxin and cytokinins on callus induction from leaf blade, petiole and stem segments of in vitro grown Sheridan grape shoot. Journal of Plant Biotechnology 4(1): 17-21.
Mederos, M.S. 2005. Culture medium requirements for micropropagation of Vitis vinifera L. cv. Listan blanco. Acta Horticulturae 754: 105-110.
Mhatre, M., C.K. Salunkhe and P.S. Rao. 2000. Micropropagation of Vitis vinifera L. Vitis 22: 363-374.
Muhammad, J.J., H. Abbas, R. Sultana, M.M. Qasim and I.A. Khan. 2008. Effect of growth hormones on micropropagation of Vitis vinifera L. cv. Perlette. Pakistan Journal of Botany 40(1):105-109.
Murashige, T. and F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum15: 473-497.
Osman, S.A., O.M. Elamin and M.E. Elkashif. 2009. Effect of training, pruning and harvest time on growth, yield and fruit quality of selected grapevine cultivars under Gezira conditions, Sudan. Gezira Journal of Agricultural Science 7(1): 47-57.
Shoemaker, J.S. 1978. Small Fruit Culture. Fifth Edition. The AVI. Publishing Co., INC., Westport, Connecticut, USA.
Published
2013-11-22
How to Cite
ALI, Osman; ALI, Mohamed; SALAMA, Abdel Moneim. Effects of cytokinins and auxins on the micropropagation of a local grapevine (Vitis vinifera L.) cultivar, using nodal explants. Gezira Journal of Agricultural Science, [S.l.], v. 11, n. 2, nov. 2013. ISSN 1728-9556. Available at: <http://37.60.236.48/index.php/gjas/article/view/1068>. Date accessed: 03 june 2026.
Section
Articles